Статті з ветеринарії курей на Picainfo, Мікоплазмоз птиці та заходи щодо обмеження його поширення
Тілозін – макролідний антибіотик, який використовується тільки у ветеринарії. Активний головним чином по відношенню до грампозитивних і деяких грамнегативних мікроорганізмів. Однак для ветеринарної практики найбільше значення має його властивість пригнічувати розвиток мікроорганізмів плевропневмоніоподібної групи (PPLO, мікоплазм), причому в цьому напрямі він перевершує активність багатьох сучасних хіміотерапевтичних засобів. Поглиблені порівняльні фізико-хімічні та токсикологічні дослідження показали ідентичність між тилозином виробництва заводу Біовет, Болгарія та тилозином Еланко, США. Мета справжньої роботи - звернути увагу ветеринарів-фахівців на результати та деякі нові можливості застосування тилозину для боротьби з обмеженням та ліквідацією мікоплазмозу у курей та індичок. При розробці заходів боротьби з мікоплазмозом необхідно брати до уваги епізоотологічні особливості хвороби. Відомо, що передача мікоплазм від хворих на птахів здоровим здійснюється двома способами - шляхом прямого контакту (горизонтально) і через яйце (вертикально). Для розриву ланцюга: дорослі птахи – яйце – новонароджені курчата необхідно звернути увагу на наступні моменти:
1) знищення мікоплазм в організмі дорослого птаха до того, як вони перейшли в яйце; 2) обробка заражених яєць; 3) елімінування мікоплазм у новонароджених курчат 4) видалення зі стада всіх позитивних захворювання птахів. У нашому випадку ми зупинимося на результатах застосування тилозину лише у перших двох напрямках. Досвід щодо запобігання виділенню мікоплазм з яйцями заражених птахів зробили Yoder та Hofstad. Для цієї метиштучно зараженим M. gallisepticum курам вводили підшкірно протягом 5 послідовних днів тилозину тартрат у дозі 50 мг/птах. У жодному зі знесених 394 яєць не були ізольовані мікоплазми порівняно з 11 із 409 яєць (2,4%) у контрольній групі. Для знищення мікоплазм в інфікованих яйцях запропоновано кілька методів. Один із них, що ґрунтується на термостабільності M. gallisepticum, це нагрівання яєць перед інкубацією. Однак цей спосіб знезараження виявився вкрай ненадійним, оскільки досить важко досягти бажаної температури всередині яйця без ураження зародка. Стоенеску і Кирстец заражали курячі яйця M. gallisepticum (яка in vitro була повністю знищена за 4 години при 45,5°С) і поміщали їх на 8-12 годин у термостат при температурі 45,5°С. Після 8-годинного перебування яєць у термостаті не спостерігали жодного ефекту, а після 12-годинної експозиції вільними від мікоплазм виявилося 60% яєць. При дослідах Sakala нагрівання яєць перед інкубацією протягом 4 годин при 46°С вів до зниження виведення курчат на 20% при успішному усуненні інфекції лише у 6,5-20% яєць, а Grimes вважає, що нагрівання індича яєць протягом 8 годин при 40-46 ° C супроводжується вимиранням великої частини зародків (на 7-й день інкубації були живі лише 66%), причому при цій процедурі немає повного звільнення від M. gallisepticum. Другим методом, що застосовується для знищення мікоплазм в яйцях, є метод занурення їх перед інкубацією в різні антибіотичні розчини, причому для збільшення дифузії антибіотика всередину яйця використовується температурно-диференціальний метод (нагрівання яєць до температури - найчастіше 37°С - і після цього занурення їх у холодні антибіотичні розчини) або метод змінного атмосферного тиску (спочатку тиск на рідину знижується з метою створеннявакууму у повітряній камері, після чого відновлюється до нормального рівня). Кількість антибіотика, що проник в яйце, варіює між 0,2 і 2 мг/яйце і знаходиться в прямій залежності від температури яєць перед зануренням, часу занурення, концентрації антибіотичного розчину, ступеня зниження і часу, протягом якого яйця знаходяться під редукованим (відновленим) атмосферним тиском , виду яєць (курячі абсорбують краще за індича), віку яєць (старі поглинають у вищій мірі, ніж свіжі) і не залежить від товщини шкаралупи та відносної маси яєць. Надзвичайно важливою є обставина, що тилозин стабільний усередині яйця на 10-й день інкубації курячих яєць, які поринали в розчини тилозину з концентрацією 1000 ppm. Yoder і Hofstad реєстрували в жовтку від 3 до 24 мг/см3, алантоїсної рідини зародка від 0,2 до 0,4 мг/см3 і рідини амніону - сліди антибіотика. Подібні результати були отримані і при дослідах на індичах яйцях, що занурювалися двічі в розчин тилозину з концентрацією 3000 ppm на 8-й день інкубації жовток містив 0,5 мг/см3, а на 18-й день -0,05 мг/см3.