ВИВЧЕННЯ ТА АНАЛІЗ ЕПІЗОТИЧНОЇ СИТУАЦІЇ З ІНФЕКЦІЙНИХ І ІНВАЗІЙНИХ ХВОРОБРІЗНИХ РИБ

При вирощуванні осетрових риб в УЗВ особливо пильна увага приділяється контролю якості води. Насамперед це стосується вмісту у воді амонію та нітритів, підвищені концентрації яких вже самі по собі можуть призвести до захворювання чи загибелі риб.

Забруднення басейнів та фільтрів органічними речовинами, уповільнений водообмін призводять до концентрації патогенів (паразитів) у замкнутому просторі. За відсутності системи знезараження на водоподачі в УЗВ поширення інфекції чи інвазії може статися стрімко.

Профілактичні заходи, що проводяться в УЗВ, включають комплекс ветеринарно-санітарних правил, спрямованих на запобігання внесенню в систему збудників захворювань (вірусів, бактерій, грибів, паразитів), які можуть викликати загибель риб. У першу чергу це ретельне іхтіопатологічне обстеження і обов'язковий карантин для риб перед посадкою в УЗВ. Термін карантину визначається у кожному конкретному випадку, він має бути не менше ніж 30 діб.

Перед посадкою риб в УЗВ проводиться антипаразитарна обробка риби. Для цього використовують різні лікувальні засоби залежно від поставленого діагнозу.

Ретельний іхтіопатологічний контроль необхідний при пересадці риб всередині УЗВ. Особливо важливою є рання діагностика захворювань. Навіть за поведінкою можна відрізнити хворих риб від здорових: вони зазвичай піднімаються в поверхневі шари води, починають заковтувати повітря, втрачають координацію рухів, не реагують на наближення людини. Діагноз не можна ставити лише на підставі клінічних ознак. Необхідний аналіз епізоотологічних, патологоанатомічних даних та результатівіхтіопатологічних досліджень. Чим раніше виявлено захворювання, тим швидше можна вжити заходів щодо лікування риб та скоротити збитки від захворювань. [2].

У комплексі профілактичних заходів велике значення має дезинфекція басейнів, інвентарю, рибоводних споруд. Як спеціальні дезінфікуючі засоби використовують марганцево-кислий калій, хлорне вапно, гіпохлорит кальцію, хлорамін Б та інші.

Крім дотримання рибоводних вимог, інформація про те, коли і за яких умов зафіксовано випадки загибелі риб, дозволяє виявити фактори, що мають найбільше значення в даний момент.

ТЕХНОЛОГІЯ ПЕРЕРОБКИ РИБНОЇ ПРОДУКЦІЇ

ПВУП «Акваторія» реалізує живого товарного осетра різних порід (українського, льонського, стерлядь, а також безтер, остер та ін.) через посередників до ресторанів м. Мінська. Жодної переробки продукції не ведеться.

ІНДИВІДУАЛЬНЕ ЗАВДАННЯ.

ОСОБЛИВОСТІ ТЕХНОЛОГІЇ ОТРИМАННЯ І ПІДРУЧУВАННЯ МОЛОДІ ОСЕТРОВИХ У ПВУП «Акваторія»

Спочатку ПВУП «Акваторія» проектувалося як виростне встановлення продуктивністю 100 тонн на рік. Планувалося закуповувати необхідну кількість малька, зарибляти рибоводні ванни та вирощувати до товарної маси. Надалі УЗВ було переобладнано для самостійного отримання ікри, її інкубації, отримання личинки та її подальшого підрощування. Для цього було сформовано свої маткові стада стерляді, ленського та українського осетра.

ФОРМУВАННЯ І ЗМІСТ РЕМОНТНО-МАТОЧНИХ СТАД ОСЕТРОВИХ

Результати робіт із штучного відтворення осетрових багато в чому залежать від якості використовуваних виробників. Тому велика увага приділяється правильному формуванню та утриманню ремонтно-маткового стада.

Привирощуванні ремонтної групи проводиться інвентаризаційний облік (2 етапи), що дозволяє формувати стадо із здорових риб. Перший етап формування РМС спрямовано відбір зовні фізично здорових особин. Звертається увага на характер статури, відсутність каліцтв, травм та ознак захворювань. Він проводиться у віці одного року.

Другий етап проводиться зазвичай після досягнення риби товарної маси. Його головна мета полягає не так у відборі здорових особин, як у формуванні статевої структури майбутнього маточного стада. У разі гостро стоїть необхідність раннього визначення статі. Відомо, що осетрові дозрівають пізно. Так, білуга вперше нереститься у віці 18-20 років, український осетр – у 12-16 років, севрюга – у 12-15 років і лише стерлядь стає статевозрілою у 3-4 роки. Визначити стать особини можна тільки до моменту дозрівання виробників. Але утримувати величезні стада риб, половина з яких – самці, нерентабельно. Тому вчені поставили перед собою завдання - визначати підлогу риб, що вирощуються якомога раніше.

Список методів визначення статевої приналежності в осетрових риб (Acipenseridae) включає: анатомічні (біопсійні та ендоскопічний), фізіолого-біохімічні, ендокринологічні та ультразвукові діагностики (УЗД). Цей перелік, ймовірно, розширюватиметься, що зумовлено як актуальністю визначення статі в осетрових, а й наявністю серйозних недоліків у вищевказаних методів. До найбільш поширених і що представляють найбільший інтерес методів відносяться біопсія гонад і УЗД. У ПВУП «Акваторія» визначення статі здійснюється шляхом біопсії (лапаротомія) – візуальні дослідження гонад через невеликий бічний розріз черевної стінки.

Щупові проби зазвичай беруться за допомогою щупа діаметром 3мм, виготовленим із нержавіючої сталі. Щуп вводиться в тіло риби в районі 3 жучки від анального отвору під кутом 30 градусів щодо тіла риби, на глибину 3-5 сантиметрів. Перед кожним проведенням щупових проб щуп дезінфікують у 96% етиловому спирті. Визначення статі риби за допомогою щупових проб – простий та маловитратний спосіб оцінки зрілості гонад, але досить травматичний.

Перевагами діагностики статі у осетрових методом лапаротомії з оглядом гонад є доступність у будь-якому рибному підприємстві, негайне отримання інформації про статевому дозріванні, висока інформативність та достовірність, низькі витрати на її виконання. Однак його застосування потребує особливої ​​підготовки спеціалістів.

Таким чином у ПВУП «Акваторія» були сформовані свої маткові стада стерляді, ленського та українського осетра, бестера (білуга × стерлядь), а також гібридів українського та ленського осетрів у двох комбінаціях українська ×ленська та ленська ×українська.

Для утримання виробників та ремонту було встановлено 6 додаткових басейнів, циліндричної форми об'ємом приблизно 6 м3 (рис. 21).

Мал. 21. Басейни для утримання РМС

При вирощуванні виробників у технологічний цикл вводиться період утримання за низької температури – «зимівля».

ПІДГОТОВКА ВИРОБНИКІВ І ОТРИМАННЯ ПІДЛОВИХ ПРОДУКТІВ

Підготовку виробників до використання можна поділити на кілька етапів:

• попереднє тестування виробників;
• визначення температурного режиму та термінів переднерестового витримування;
• тестування виробників перед запровадженням гормональних препаратів.

За підсумками осіннього бонітування виробників відбираються особини, які здатні дати зрілістатеві продукти в майбутньому сезоні.

Весняне бонітування проводиться з метою визначення режиму та часу переднерестового утримання та термінів отримання статевих продуктів. Здійснюється відбраковування непридатних для використання виробників, а також проводиться тестування риб за рівнем готовності до нересту. Для цього за допомогою біопсії визначають коефіцієнт поляризації ооциту і на його підставі формують групи самок [5].

Суть цього методу полягає в наступному: рибу фіксують; під третю черевну жучку від анального отвору під кутом 45 вводять щуп; витягують 10-15 ікринок, які потім фіксують двохвилинним кип'ятінням у фізіологічному розчині. Потім щонайменше 10 ікринок розкривають лезом і з допомогою бінокуляра визначають відстань від ядра ооцитів (до анімальному поясу) до внутрішньої оболонки икринки (рис. 22) [2].

Розрахунок величини коефіцієнта поляризації ооциту проводиться за формулою: Kп=l÷L×100%, де Kп - коефіцієнта поляризації ооциту; l – відстань від верхньої частини ядра до оболонки ікринки; L - Відстань від нижньої частини ікринки до анімального полюса.

Мал. 22. Схема виконання промірів ооциту для розрахунку коефіцієнта поляризації

За результатами визначення коефіцієнта поляризації риб поділяють на групи (табл. 8.2.1)

Таблиця 8.2.1 - Групи самок за показниками коефіцієнта поляризації Kп та рекомендації щодо їх використання

№ п/п	Kп	Категорія	Рекомендації щодо використання
Kп ≤ 5	Перезрілі	Вирушають у нагул
5 ≤ Kп ≤ 10	Зрілі 1	Після досягнення нерестових температур ін'єктуються «сурфагоном»
10 ≤ Kп ≤ 12	Зрілі 2	задосягненні нерестових температур ін'єктуються «сурфагоном»
12 ≤ Kп ≤ 15	Близькі до дозрівання	Ін'єкції проводять після витримування при нерестових температурах 7-14 діб.
15 ≤ Kп ≤ 18	Здібні до дозрівання	Витримуються за нерестових температур 20-40 діб перед ін'єкцією
18 ≤ Kп	Незрілі	Відсідають на нагул

З таблиці видно, що самки 2-ї та 3-ї групи при досягненні нерестової температури використовуються без повторної біопсії. Самок 4-ї та 5-ї групи використовують, провівши повторну біопсію. Самки 1-ї та 6-ї групи для нересту не придатні.

Висновок на нерестовий режим роблять з підвищенням температури на 1 С для самок і на 1,5 С для самців. При досягненні температури 13 З здійснюється витримування протягом двох трьох діб, потім плавне підвищення температури на 1 З на добу до нерестової температури 16.

Потім здійснюється гормональна стимуляція. Як стимулятор овуляції в ПВУП «Акваторія» застосовується сурфагон. Він впливає на гіпофіз риби, стимулюючи виділення гонадотропіну. Самцям ін'єкцію роблять одноразово (2-4 мікрог/кг), самкам дворазово (4-8 мікрог/кг). Перша ін'єкція за 24 години до початку отримання ікри у розмірі 10% загальної дози, друга через 12 годин (90%). Через добу після першої ін'єкції починають одержувати статеві продукти.

Якщо раніше (5-7 років тому) ікру отримували методом забою самок, які використовувалися з цією метою одноразово, тепер від однієї самки можна отримувати статеві продукти до 10 раз. У ПВУП «Акваторія» використовується прижиттєвий метод отримання ікри засобами підрізання яйцеводів (рис. 23), розроблений С. Б. Подушка.

Мал. 23.Надрізання яйцеводів скальпелем

При використанні методу Подушки («надрізання яйцеводів») самку поміщають на спеціальний столик похилий, конструкція якого може бути різна, в положенні на боці головою вгору. Через статевий отвір вводять скальпель і роблять надріз довжиною 1,5-2,5 см у каудальній частині стінки одного або обох яйцеводів, відкриваючи тим самим черевну порожнину її каудальної частини. Через одержаний розріз ікру зціджують, акуратно масажуючи задню третину черевця. Іноді підтримки створеного розрізу у відкритому стані доводиться вдаватися по допомогу ручки скальпеля чи іншого плоского металевого предмета.

Після отримання ікри розрізи не потрібно зашивати, а ікру через них можна зціджувати за кілька прийомів.

Отримання сперми здійснюється за допомогою уретрального катетера, одягненого на шприц Жане (рис.24).

Мал. 24. Відбір сперми у самця стерляді з використанням катетера

Катетер та шприц повинні бути сухими та чистими. Самця фіксують на боці, черевом до краю столика, накритого сухою ганчіркою, одночасно затискаючи статевий отвір, щоб уникнути втрат сперми. Половий отвір і область навколо нього насухо витирається ганчіркою.

Після виконання зазначених процедур вільний кінець катетера вводиться в статевий отвір таким чином, щоб кінець увійшов в один із сім'япроводів на 1-3 см, шприц опускається трохи нижче краю столу, щоб катетер, що похило розташований від статевого отвору до шприца, не мав петель і вигинів. Дуже повільно приділяється поршень шприца, набираючи сперму, спостерігаючи, щоб катетер не присмоктувався до стінок сім'япроводу, так як це може їх пошкодити і призвести до потрапляння крові в сперму.

---