Застосування імунноїмультивалентної сироватки для лікування та профілактики респіраторно-кишкових

УДК: 619: 616. 98: 579. 842. 11

Не секрет, що в більшості тваринницьких господарств вірусні хвороби молодняку великої рогатої худоби, так звані вірусні пневмоентерити, завдають відчутних економічних втрат, обумовлених уповільненням зростання, зниженням ваги, відмінком молодняку 1–4-місячного віку та ін.

У цій статті ми опишемо найбільш простий, дієвий та економічно вигідний, на наш погляд, метод, який був апробований та успішно впроваджений у практику господарств

У господарство, фахівці якого звертаються до нашої лабораторії для встановлення причин відмінка молодняку великої рогатої худоби, виїжджає співробітник для збору анамнестичних даних по цій групі тварин. Він відбирає біоматеріал, у тому числі сироватку крові, для лабораторних досліджень на всі вірусні респіраторно-кишкові інфекції, що вражають телят у віці від тижня до 4-5 міс.

Сироватку досліджують у реакції непрямої гемаглютинації (РНГА), методом, затвердженим та запропонованим фахівцями вірусологічного відділу Центральної науково-методичної ветеринарної лабораторії, виявляючи, таким чином, збудників вірусних респіраторно-кишкових інфекцій молодняку великої рогатої худоби, при збудника хламідіозу, якщо такий є. Потім їх розставляють пріоритетом, виходячи з інтенсивності напруженості титру антитіл.

Від клінічно здорових, які пройшли повну диспансеризацію та весь курс профілактичних досліджень корів (матерів телят цієї групи, 35–40 голів), відбирають сироватку крові в кількості 10 мл і досліджують її в РНГА. За даними дослідженнявибирають тварин з найбільш високими титрами антитіл до захворювань, виявлених у телят, формуючи цим групу про материн-донорів, титр антитіл у своїй регулярно контролюють.

Так, у господарствах Ставропольського краю, де виникали проблеми із захворюваннями молодняку на пневмонерити, у більшості телят виявлялися антитіла (за спаданням) до хдамідіозу, парагрипу-З, респіраторно-синцитіальної інфекції та інфекційного ринотрахеїту. Найменшою мірою до аденовірусної інфекції. До раніше реєстрованої у господарстві вірусної діареї клінічних ознак і антитіла у телят були відсутні. Але антитіла до збудника вірусної діареї великої рогатої худоби в невисоких титрах були виявлені у кількох корів, які також були відібрані донорської групи.

Отже, і матері-донори підбиралися відповідно до зазначеного списку захворювань.

Для інших вірусних захворювань, які раніше реєструвалися в цих господарствах, але антитіл яких у телят були відсутні, було досить невисоких титрів донорських антитіл для створення профілактичного імунного фону.

Аналогічний відбір вели з будь-яких інших проблемних вірусних інфекцій. Після формування групи донорів проводили добір донорської крові, не більше 1500 мл від однієї тварини. Особливості відбору не дотримувалися, заповнюючи стерильні судини ємністю 2000 мл на дві третини. Потім, після знезараження та попередньої специфічної обробки відібраної крові, отримували сироватку, яку ретельно зливали у стерильні колби та центрифугували. Після чого відцентрифуговану та профільтровану сироватку пропускали через спеціальний апарат УФО-опромінення та озонування крові «НАДІЯ-О» із вбудованими ртутно-кварцовими лампами, в режимі закритого контуру. Процедуравироблялася з попередньо підготовленим стерильним флаконом, із сироваткою з якого кисень за допомогою вбудованого роликового насоса апарату прокачується через камеру опромінювача та повертається у флакон. Спосіб забезпечує досягнення високої концентрації озону, що має сильний бактерицидний ефект, за 15-20 хвилин. Таким чином, стерильність досягається не тільки шляхом обробки сироватки крові озоном, але завдяки додатковому ультрафіолетовому опроміненню.

Даний метод дозволяє уникнути застосування таких традиційних консервантів, як мертіолят або фенол, які є дуже токсичними речовинами навіть у невеликих дозах.

Після цього у стерильних умовах з кожного флакона відбирали по 1-2 мл сироватки у загальну пробірку. Відібрану збірну пробу досліджували на стерильність відповідно до ГОСТів. Одночасно ставилася біопроб на білих мишах для виключення токсичності препарату. Ця ж збірна сироватка додатково досліджувалась у РНДА на всі проблемні вірусні інфекції. Загальний титр на кожне захворювання регулярно фіксувався у журналі. До застосування допускалася лише стерильна та нетоксична сироватка з оптимальними тиграми антитіл.

Імунну мультивалентну сироватку застосовували для пасивної лікувально-профілактичної імунізації молодняку з 3-4 тижневого віку за схемою, складеною індивідуально для кожної групи телят. Лікувальні дози, терміни та кратність введення залежать від форми та тяжкості захворювання, загального стану та ваги тварини. У профілактичних дозах кількість препарату, що вводиться, відповідно знижувалася.

Крім того, залишковий озон, що міститься в сироватці при введенні, стимулює окислювально-відновні процеси навколишніх тканин, чим покращує та прискорює її розсмоктування та засвоєнняорганізмом.

При ускладненні вірусної інфекції секундарною бактеріальною флорою мультивалентну сироватку застосовували у поєднанні з антибіотиками після виявлення ПБА, визначення його чутливості з попереднім підтитруванням антибіотика.

При застосуванні імунної мультивалентної сироватки були отримані наступні результати (зокрема щодо племзаводу «Кубань» Кочубеївського району Ставропольського краю): після 3–4-х кратного введення відмінок телят скоротився на 20–30 %; після застосування протягом 7–8 місяців – на 60–70 %; до кінця року - припинився зовсім.

Підсумовуючи дослідження, відзначимо, що перевагою методу є можливість у мінімально стислі терміни розпочати приготування імунної мультивалентної сироватки. При цьому в господарствах постійно перебувають хворі на вірусні респіраторно-кишкові інфекції донори, тому можлива зміна компонентів сироватки залежно від того, за якими вірусними респіраторно-кишковими інфекціями неблагополучне те чи інше господарство. Сироватка, що виходить, не токсична, її можна приготувати в умовах районних або обласних ветеринарних лабораторій.

Однак тривалі спостереження показали, що дана імунна сироватка, виготовлена з крові тварин одного господарства, прийнятна для застосування тільки в його межах, тому що основну роль відіграє імунний фактор, заснований на близькій святі «мати — плід», а за умови застосування її до неспоріднених тваринам іншого господарства очікуваний ефект досягається над повною мірою.

Крім того, збудники інфекційних хвороб в інших господарствах можуть мати іншу антигенну структуру та застосування сироватки у цьому випадку не доцільно, оскільки не призводить до формування специфічних імунних комплексів.